Vol. 3 No. (2006)

Published: 2023-08-18

Articles

  • Zmiany ekspresji potencjałozależnych kanałów K+ w neuronach

    Bartłomiej Szulczyk, Paweł Szulczyk
    7-12
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.02

  • Regulacja funkcji kanałów jonowych Na+ przez receptory opioidowe

    Grzegorz Witkowski, Paweł Szulczyk
    13-19
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.03

  • Modulacja potencjało-zależnych kanałów jonowych Cat+ przez receptory dopaminergiczne

    Rafał Rola, Paweł Szulczyk
    21-29
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.04

  • Wpływ pH na efekt modulacji aktywności kanałów potasowych Kvl .3 przez jony cynku

    Andrzej Teisseyre, Jerzy W. Mozrzymas
    31-40
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.05

  • Napięciowa zależność kinetyki prądów GABA ergicznych mierzonych przy różnych wartościach zewnątrzkomórkowego pH

    Maria Pytel, Katarzyna Mercik, Jerzy W. Mozrzymas
    41-48
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.06

  • Wpływ fłurazepamu i zewnątrzkomórkowego pH na amplitudę i kinetykę GABA ergicznych prądów synaptycznych w hodowanych neuronach z hipokampa szczura

    Piotr Brzeźnicki, Ewa Pindel, Tomasz Wójtowicz, Michał Piast, Jerzy W. Mozrzymas
    49-55
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.07

  • Wpływ ß-cyclodekstryny na kinetykę zmian konformacyjnych receptora GABAa w hodowanych neuronach hipokampalnych szczura

    Katarzyna Mercik, Maria Pytel, Jerzy W. Mozrzymas
    57-66
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.08

  • Receptory glutaminianu u roślin

    Elżbieta Król, Maria Stolarz, Halina Dziubińska, Kazimierz Trębacz
    67-73
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.09

  • Zastosowanie woltametrii w badaniach neurofizjologicznych

    Marek Wieczorek, Vitaly S. Palamarchouk
    75-85
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.10

  • Interakcje między neurotoksynami na poziomie układu nerwowego owadów

    Maria Stankiewicz, Justyna Ciołek, Françoise Grolleau, Ewa Kielbasiewicz, Wojciech Kądziela, Marcel Pelhate, Vincent Corbel, Bruno Lapied
    87-93
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.11

  • Zmiany hipokampalnego rytmu theta po inaktywacji brzusznego pola nakrywkowego (VTA) u szczura w narkozie uretanowej

    Jolanta Orzeł-Gryglewska, Edyta Jurkowlaniec, Weronika Trojniar
    95-107
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.12

  • Układ opioidowy jądra konarowo-mostowego nakrywki hamuje hipokampalny rytm theta wywołany stymulacją farmakologiczną u szczurów

    Emilia Leszkowicz, Paweł Malulewicz, Weronika Trojniar
    109-120
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.13

  • Elektrofizjologiczne parametry hipokampalnego rytmu theta: podstawy neuronalne programowania amplitudy i częstotliwości sygnału EEG

    Renata Bocian, Henryk Gołebiewski, Barbara Eckersdorf, Jan Konopacki
    121-133
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.14

  • Udział synaps elektrycznych w generowaniu hipokampalnego rytmu theta in vivo

    Henryk Gołebiewski, Barbara Eckersdorf, Jan Konopacki
    135-146
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.15

  • Udział synaps elektrycznych w powstawaniu hipokampalnego rytmu theta w warunkach pozaustrojowych

    Tomasz Kowalczyk, Henryk Gołebiewski, Jan Konopacki
    147-155
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.16

  • Elektrofizjologiczne badania neuronalnych mechanizmów plastyczności kory baryłkowej myszy wywołanych uczeniem się

    Krzysztof Tokarski, Joanna Urban-Ciećko, Grzegorz Hess
    157-167
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.17

  • Aktywności przyśrodkowej kory czołowej szczura podczas treningu dyskryminacji węchowej - rejestracja pojedynczych komórek

    Ewa Kublik, Susan J. Sara
    169-178
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.18

  • Projekcja oreksynowa (hipokretynowa) nowym układem niespecyficznym mózgowia ssaków

    Marian H. Lewandowski
    179-187
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.19

  • Sposób na bregmę

    Tomasz Błasiak
    189-198
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.20

  • Układ 10-20 lokalizacji elektrod EEG czyli gdzie tkwi pewien błąd koncepcyjny

    Andrzej Stanisławczyk, Tomasz Zyss, Bartosz Sawicki
    199-211
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.21

  • Digitalizacja położenia elektrod dla techniki hr EEG

    Tomasz Zyss
    213-222
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.22

  • Dynaflow ™ 48, a microfluidic chip solution for increasing throughput and data quality in patch-clamp-based drug screening

    Daniel Granfeldt, Marie-Louise Johansson, Jon Sinclair, Johan Pihl, Mattias Karlsson
    223-230
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.23

Other

  • Wprowadzenie

    Jan Konopacki
    DOI: https://doi.org/10.18778/1730-2366.03.01